Analyse Révolutionnaire de l’Antibiorésistance des Entérobactéries à Sétif en 2023

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🏫 Univesité Ferhat Abbas Sétif - Faculté des Sciences de la Nature et de la Vie - DEPARTEMENT DE MICROBIOLOGIE
📅 Mémoire de fin de cycle en vue de l'obtention du diplôme de MASTER - 2016/2017
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Cette étude révèle comment l’antibiorésistance des entérobactéries productrices de β-lactamases à spectre étendu impacte la santé publique à Sétif. Découvrez les gènes responsables de cette résistance et les implications cruciales pour le traitement des infections.


Support génétique mobile de la résistance

  • Les plasmides

Les souches d’entérobactéries productrices de BLSE ont subit une extraction de leur contenu plasmidique par la méthode de (Kado et Liu. 1981).

L’analyse du contenu plasmidique des souches, après migration sur gel d’agarose (0.8%) a révélé que la majorité de souches hébergent un à quatre types de plasmides.

Tableau 8 : Différents types de plasmides extraits des EBLSE
Nom de la soucheCode de la soucheNombre de types de plasmideNombre d’isolats
Escherichia coliEco1N=19 (1.11.12.14.15.16.18.19.20.21 23.24.32.34.39.41.43.53.54)
Escherichia coliEco2N=1 (48)
Escherichia coliEco3N=2 (4.44)
Escherichia coliEco4N=1 (25)
Klebsiella pneumoniaeKpn1N=12 (3.6.22.26.28.29.30 31.36.38.40.50)
Klebsiella pneumoniaeKpn2N=6 (9.37.42.45.47.52)
Klebsiella pneumoniaeKpn3N=3 (2.7.8)
Klebsiella pneumoniaeKpn4N=1 (51)
Enterobacter cloacaeEcl1N=3 (13.27.33)
Enterobacter cloacaeEcl3N=1 (56)
Morganella morganiiMmo1N=3 (17.46.55)
Serratia marcescensSma1N=2 (5.35)
Enterobacter aerogenesEae1N=1 (10)
Citrobacter freundiiCfr1N=1 (49)

( ) Numéros des isolats

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Figure 28. Profil plasmidique des 56 souches d’EBLSE.

Caractérisation des BLSE par la PCR-multiplex

La caractérisation des gènes de BLSE effectuée sur l’ADN (plasmidique ou chromosomique) de l’ensemble des souches par l’amplification multiple des gènes CTX-M, TEM et SHV a permis l’obtention de différents gènes de résistance amplifiés sur 33 souches.

BLSE de type CTX-M

Ce type de BLSE se reconnaît facilement sur l’antibiogramme en gélose car le CTX est habituellement la molécule la plus touchée avec une très bonne inhibition autour du disque contenant un inhibiteur de β-lactamases.

La caractérisation moléculaire de β-lactamases par PCR a révélé que 29/33des souches d’entérobactéries productrices de β-lactamases à spectre étendue provenant des patients à titre externe et de patients hospitalisés aux différents services à l’hôpital, sont toutes porteuses d’un gène blaCTX-M (Fig.29), soit une prévalence de (87.88 %). Montré et Faire les espèces

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Figure 29. Amplifications par PCR-Multiplex des gènes blaCTX-M, blaSHV et blaTEM.

BLSE de type SHV

La BLSE de type SHV a été observée chez 15souches d’EBLSE soit une prévalence de (42.42 %) existant chez 12 souches K. pneumoniae, 2 d’E. coli et une souche d’E. aerogenes.

BLSE de type TEM

Les BLSE de type TEM sont peu fréquentes, elles ont été retrouvées chez 9 souches appartenant à K. pneumoniae (N=6), E. coli (n=2) et une seule souche E. aerogenes, soit une prévalence de (27.27 %).

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Figure 30 : Prévalence des gènes de résistance chez les souches amplifiées
100,00%E. coli (14)K. pneumoniae (14)E. cloacae (2)M. morganii (2)E. aerogenes (1)
blaCTX-M68,75%44,83%100,00%100,00%33,33%
blaSHV12,50%37,93%33,33%
blaTEM18,75%17,24%33,33%
Résistances multiples
  • BLSE de type CTX-M/SHV

La BLSE de type CTX-M/SHV est observée chez 13 souches soit une prévalence de (39.39%), 11 K. pneumoniae, une E. aerogenes et une E. coli.

  • BLSE de type CTX-M/TEM

Ce type de BLSE a été observé chez 6 souches soit (18.18%), 4 K. pneumoniae, 1 E. aerogenes et 1 E. coli.

  • BLSE de type CTX-M/SHV/TEM

La BLSE de type CTX-M/SHV/TEM est observée chez 5 souches soit une prévalence de (15.15 %), 4 K. pneumoniae et une seule souche E. aerogenes.

Tableau 9 : Caractéristiques générales et moléculaires des souches d’entérobactéries productrices de β-lactamases à spectre étendu isolées au CHU de Sétif
SouchesCodeServicesprélèvementSexeGène BLSE
Kpn1(72c)OrthPusFblaCTX-M
Kpn2(62c)HtoSangFblaCTX-M
Kpn3(72s)OrthPusFblaSHV
Kpn4(62s)HtoSangFblaSHV
Kpn5(72t)OrthoPusFblaTEM
Kpn6(62t)HtoSangFblaTEM
Kpn7ExtUrineMblaTEM
Kpn10BUCLCRMblaCTX-M blaSHV
Kpn11N-ChTrachéalMblaCTX-M blaSHV blaTEM
Kpn18ExtPusMblaCTX-M blaSHV
Kpn19CxUrineMblaCTX-M blaSHV
Kpn20ExtUrineMblaCTX-M blaSHV
Kpn22OrthPusFblaCTX-M blaSHV
Kpn23ExtPusFblaCTX-M blaSHV
Kpn24N-natLCRFblaCTX-M
Kpn31NéphSonde UriMblaCTX-M blaSHV blaTEM
Kpn32PédLCRMblaCTX-M blaSHV
Kpn36PédUrineMblaCTX-M
Kpn38OrthoPusFblaCTX-M blaSHV blaTEM
Kpn39HtoSangFblaCTX-M blaSHV blaTEM
Eco9CHFPusFblaTEM
Eco13CxPusMblaCTX-M
Eco14BUMPusFblaCTX-M
Eco15ExtUrineFblaCTX-M
Eco16PédUrineFblaSHV
Eco17CxUrineMblaCTX-M blaSHV
Eco21ExtUrineFblaCTX-M blaTEM
Eco25CxPusMblaCTX-M
Eco26PédLCRMblaCTX-M
Eco29CxUrineMblaCTX-M
Eco30BUCPusMblaCTX-M
Eco33CxUrineFblaTEM
Eco35CxUrineFblaCTX-M
Eco37ExtUrineFblaCTX-M
Eae12CardioPusMblaCTX-M blaSHV blaTEM
Ecl8ExtUrineFblaCTX-M
Ecl27NéphUrineFblaCTX-M
Mmo28MIPusMblaCTX-M
Mmo34MIPusMblaCTX-M

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